Ａｂｓｔｒａｃｔ： 【Ｏｂｊｅｃｔｉｖｅ】 Ｔｏ ｌａｂｅｌ ｍｕｒｉｎｅ ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ-ｄｅｒｉｖｅｄｍｅｓｅｎｃｈｙｍａｌ ｓｔｅｍ ｃｅｌｌｓ （ｍＭＳＣ） ｗｉｔｈ Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ２／ｍＫａｔｅ２ ｒｅｐｏｒｔｅｒ ｇｅｎｅｓ ａｎｄ ｔｒａｃｋ ｍＭＳＣｔｈｒｏｕｇｈ ｂｏｔｈ ｂｉｏｌｕｍｉｎｅｓｃｅｎｔ ｉｍａｇｉｎｇ （ＢＬＩ） ａｎｄ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍａｇｉｎｇ． 【Ｍｅｔｈｏｄｓ】 ＴｈｅｍＭＳＣ ｗｅｒｅ ｉｓｏｌａｔｅｄ ａｎｄ ｐｒｏｐａｇａｔｅｄ ｂｙ ａｎ ａｄｈｅｓｉｖｅ ｓｃｒｅｅｎｉｎｇ ｍｅｔｈｏｄ． Ｃｅｌｌ ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓａｎｄ ｍｕｌｔｉｌｉｎｅａｇｅ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｉｏｎ ｃａｐａｃｉｔｙ ｏｆ ｍＭＳＣ ｗｅｒｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ． ｍＭＳＣｗｅｒｅ ｔｒａｎｓｆｅｃｔｅｄ ｗｉｔｈ ｔｈｅ ｌｅｎｔｉｖｉｒｕｓ ＣＭＶ-Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ２-ｍＫａｔｅ２ ａｎｄ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｃｅｌｌｓ ｗｅｒｅ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ｂｙ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ-ａｃｔｉｖａｔｅｄ ｃｅｌｌ ｓｏｒｔｉｎｇ （ＦＡＣＳ）． Ｔｈｅ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ｍＭＳＣ （ｍＭＳＣ-ＣＭＶ-Ｌｕｃ２-ｍＫａｔｅ２，ｍＫａｔｅ２＋ ＞９５％） ｗｅｒｅ ｔｒａｃｋｅｄ ｂｙ ｉｎ ｖｉｖｏ ＢＬＩ ａｎｄ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍａｇｉｎｇ． 【Ｒｅｓｕｌｔｓ】 ｍＭＳＣｗｅｒｅ ｓｕｃｃｅｓｓｆｕｌｌｙ ｏｂｔａｉｎｅｄ ｆｒｏｍ ｍｕｒｉｎｅ ｂｏｎｅ ｍａｒｒｏｗ ａｎｄ ｒｅａｄｉｌｙ ｔｒａｎｓｆｅｃｔｅｄ ｗｉｔｈｌｅｎｔｉｖｉｒｕｓ ＣＭＶ-Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ２-ｍＫａｔｅ２．Ｔｈｅ ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ ｗａｓ ２２．９７％． Ｔｈｅ ＦＡＣＳ ｐｈｅｎｏｔｙｐｅ ａｎａｌｙｓｉｓ ｒｅｖｅａｌｅｄ ｔｈａｔｔｈｅ ｍＭＳＣ ｗｅｒｅ ｐｏｓｉｔｉｖｅ ｆｏｒ Ｓｃａ-１ （９４．５％） ａｎｄ ＣＤ４４ （９９．６％），ｂｕｔ ｎｅｇａｔｉｖｅ ｆｏｒ ＣＤ１１ｂ （０．０９２％） ａｎｄ ＣＤ４５ （０．１１％）． Ｔｈｅｓｅ ｃｅｌｌｓ ｒｅａｄｉｌｙ ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｔｅｉｎｔｏ ａｄｉｐｏｃｙｔｅｓ ａｎｄ ｏｓｔｅｏｃｙｔｅｓ． Ｔｈｅ ｔｒａｎｓｆｅｃｔｅｄ ｍＭＳＣ ｗｅｒｅ ｐｕｒｉｆｉｅｄ ｂｙ ＦＡＣＳ ａｎｄ ｎｅａｒｌｙ９５％ ｏｆ ｍＭＳＣ ｗｅｒｅ ｍＫａｔｅ２ ｐｏｓｉｔｉｖｅ． Ｏｐｔｉｃａｌ ｓｉｇｎａｌ ｉｎｔｅｎｓｉｔｙ ｏｆ ｍＭＳＣ ｄｅｔｅｃｔｅｄ ｂｙ ＢＬＩａｎｄ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍａｇｉｎｇ ｓｉｇｎｉｆｉｃａｎｔｌｙ ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ ｗｉｔｈ ｃｅｌｌ ｎｕｍｂｅｒｓ ｉｎ ｖｉｖｏ （ＢＬＩ：Ｒ２ ＝ ０．９８９３； ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍａｇｉｎｇ： Ｒ２ ＝ ０．９２２６）． 【Ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ】 ＣＭＶ-Ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ２-ｍＫａｔｅ２ ｌａｂｅｌｅｄ ｍＭＳＣ ｃａｎ ｓｔａｂｌｙｅｘｐｒｅｓｓ ｔｈｅ ｄｕａｌ ｏｐｔｉｃａｌ ｒｅｐｏｒｔ ｇｅｎｅ ｏｆ ｌｕｃｉｆｅｒａｓｅ２ ａｎｄ ｍＫａｔｅ２． Ｔｒａｎｓｆｅｃｔｉｏｎ ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙａｎｄ ｃｅｌｌ ｐｕｒｉｆｉｃａｔｉｏｎ ｃｏｕｌｄ ｂｅ ｐｅｒｆｏｒｍｅｄ ｉｎ ｖｉｔｒｏ ｂａｓｅｄ ｏｎ ｍＫａｔｅ２ ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ． Ｔｈｉｓｄｕａｌ ｏｐｔｉｃａｌ ｒｅｐｏｒｔｅｒ ｇｅｎｅ ｓｙｓｔｅｍ ｐｒｏｖｉｄｅｄ ａ ｇｏｏｄ， ｎｏｎｉｎｖａｓｉｖｅ ａｎｄ ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅｔｒａｃｉｎｇ ｍｅｔｈｏｄ ｆｏｒ ｔｈｅ ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ ｂｅｈａｖｉｏｒ ｏｆ ｍＭＳＣ ａｆｔｅｒ ｔｒａｎｓｐｌａｎｔａｔｉｏｎ ｓｉｍｕｌｔａｎｅｏｕｓｌｙｂｙ ＢＬＩ ａｎｄ ｆｌｕｏｒｅｓｃｅｎｃｅ ｉｍａｇｉｎｇ ｉｎ ｖｉｖｏ．